INTRODUCCIÓN
Las plantas están constantemente sometidas a la combinación de estreses bióticos y abióticos; las plagas y enfermedades forman parte de este complejo. La mayoría de los estudios sobre las interacciones entre plantas y artrópodos se han centrado en los insectos. Sin embargo, los ácaros (Chelicerata, Arachnida, Acari) también utilizan las plantas como fuente de alimento, causando daños significativos y pérdidas de rendimiento. Entre los ácaros fitófagos, la familia (Tetranychidae) es considerada la más importante con cerca de 1300 especies descritas en alrededor de 77 géneros. De estos, aproximadamente el 10% se alimentan de plantas (Vacante, 2015). Particularmente, la arañita roja Tetranychus urticae Koch, es considerada una seria limitante en la producción agrícola debido al amplio rango de hospederos, su corto ciclo de vida, una alta producción de descendencia y a la notable capacidad para desarrollar resistencia a los pesticidas (Santamaria et al., 2020).
Los ácaros se encuentran principalmente en el envés de las hojas. Dependiendo de la especie y el nivel de infestación pueden ocupar ambas superficies de la hoja. Mediante el proceso de alimentación, con su aparato bucal extraen el contenido de las células vegetales, produciendo el amarillamiento y bronceado de las hojas, el cual representa el daño (Puspitarini et al., 2021).
La dinámica poblacional de este ácaro varía con las condiciones ambientales existiendo correlación entre T. urticae con factores ambientales como la temperatura, humedad, luz solar y velocidad del viento (Bamel & Gulati, 2021). Mediante el estudio de su biología se puede conocer y entender algunos de sus aspectos poblacionales, lo cual puede brindar herramientas para el control o manejo en cultivos agrícolas, entre ellos las ornamentales ( Xu et al., 2018; Bamel & Gulati, 2021;).
Las ornamentales del género Rosa L., son producidas mundialmente y en muchas áreas las pérdidas en cantidad y calidad causadas por T. urticae Koch son significativas, incrementado los costos de producción y reduciendo las posibilidades de exportación principalmente porque el daño originado es estético, al causarlo en la flor cortada (Chacón-Hernández et al., 2018).
La estrategia para el control en ácaros es principalmente mediante el uso de productos químicos, lo cual representa riesgos tanto para los operadores como para el medio ambiente debido a su uso indiscriminado. Esto hace necesario la búsqueda de medidas alternativas de control como extractos vegetales, jabones, aceites, entre otros productos botánicos. Muchas de estas sustancias proporcionan una alta eficacia a menor costo e indiscutiblemente su manejo es más seguro al compararlos con plaguicidas de síntesis (Agut et al., 2018).
Entre estos productos naturales encontramos la canela (Cinnamomun zeylanicum). Este es un árbol perenne de tamaño mediano, originario del sur de Asia y perteneciente a la familia Lauraceae, que está aclimatado en otras regiones tropicales del mundo (de Rosamel & Heinrichs, 2020; Hurtado et al., 2020). Con el fin de implementar medidas de manejo para la arañita roja se evaluó algunos aspectos de la biología del ácaro, además del uso de la canela en diferentes presentaciones.
MATERIALES Y MÉTODOS
Establecimiento de la colonia de T. urticae
La población de T. urticae con la cual se desarrolló la investigación se estableció sobre plantas de rosas ubicadas en el Instituto de Zoología Agrícola, Facultad de Agronomía, Universidad Central de Venezuela, Aragua, para la colecta de los ácaros utilizados en el ensayo se realizaron recorridos en las principales zonas productoras, seleccionando veinticinco plantas al azar de las cuales se tomaron tres hojas por tallo, durante seis meses. Las hojas se colocaron en bolsas plásticas, previamente identificadas, envueltas en papel absorbente, y se transportaron en cavas de refrigeración al laboratorio de acarología (acarario), donde se almacenaron a 10°C, llevándose registros de presencia de ácaros de importancia para el cultivo y realizando la identificación mediante las principales características de la especie, una vez identificados los ácaros estos se colocaban sobre las plantas de rosas dispuestas en el área de ácarologia para la realización de este ensayo.
Algunos aspectos de la biología del ácaro Tetranychus urticae
Los aspectos relacionados con la biología de Tetranychus urticae fueron estudiados bajo condiciones de laboratorio de 24,5°C y 46,85% H.R, empleando la técnica modificada descrita por Siegler (1974) y Gilstrap et al. (1977). Una vez obtenida la colonia de ácaros se realizó el ensayo, el cual estuvo conformado por 60 (arenas), unidades de cría compuestas por cajas de petri plásticas de 8,8 cm de diámetro por 1,2 cm de espesor, (Figura 1) dentro de las cuales se ajustaron almohadillas circulares de poliuretano con 0,5 cm de espesor. En cada arena se colocó un foliolo de la hoja de rosa, con el envés hacia arriba rodeándolas con bandas de algodón para evitar el escape de los ácaros, luego se saturó con agua para mantener la turgencia de la hoja. Con la ayuda de un pincel de disección (triple cero) se colocó sobre el foliolo una hembra adulta fecundada proveniente de la colonia.
Cada tres horas se hicieron observaciones para verificar la oviposición, hasta obtener dos huevos por arena. Luego se eliminó la hembra, el huevo ó la larva sobrante en cada arena. Las observaciones de los diferentes estadios se realizaron en intervalos de (24) horas bajo binocular estereoscópico, para así registrar todas las características en cada uno de los estados de desarrollo.
Figura 1. Arena de cría para hembras y huevos de Tetranychus urticae
Determinación de los efectos de la canela sobre Tetranychus urticae en plantas de rosa
Cada tratamiento estuvo conformado por seis unidades de cría, en estas se colocaron diez hembras fecundadas y veinte huevos. Estructuralmente las arenas estuvieron conformadas por bandejas de poliestireno expandido (25 x 15 x 3 cm3) dentro de las cuales se ajustaron almohadillas de poliuretano con 0,5 cm de espesor, sobre las cuales se colocaron las hojas de rosa con el envés hacia arriba, estas fueron rodeadas con bandas de algodón (Figura 2). Los tratamientos descritos en el cuadro 1 fueron aplicados con una asperjadora manual (a excepción de la canela en polvo), a manera de crear una lluvia ligera como aspersión sobre cada arena, de forma de evitar eliminar a los ácaros por el impacto directo del líquido. Se realizaron observaciones a las 3, 6, 12 y 24 horas posteriores a la aplicación de cada tratamiento. La variable medida fue mortalidad (nº de individuos muertos), tantos en las hembras como en los huevos.
El tratamiento a base de canela en polvo, en el que fue usada como repelente, se aplicó con un tamiz de 250 microns, (para asegurar la uniformidad en la aplicación), la cantidad aplicada fue de 1 g por arena. El tratamiento 3 se preparó mezclando 500 g de canela en rama en 1 L de agua hirviendo, esta se dejó enfriar a temperatura ambiente por 12 horas, luego se filtró el contenido con la finalidad de separar los restos sólidos de la infusión. En el cuarto tratamiento, se evaluó el efecto del insecticida Abamectina (Vertimec®) con dosis de 0,6 mL/L. El tratamiento 5, estuvo conformado por el extracto etanólico de la canela al 5% que se obtuvo según la metodología modificada de D’Anello, K. (2008), que consistió en triturar 200 g de canela en rama macerarlos con 0,8 L de etanol al 100% esta preparación fue vertida y guardada en un envase de vidrio por un periodo de siete días en un lugar protegido de la luz. El macerado se filtró con 4 capas de gasa estéril y fue colocado en el rotovaporador con el fin de separar el extracto del alcohol por destilación, finalmente se obtuvo 20 mL del extracto puro que fue colocado en un frasco color ámbar (identificado) para luego ser refrigerado a 5°C. Y el tratamiento 6 conformado por el testigo.
Cuadro 1. Total, de tratamientos aplicados y dosis en el ensayo
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Número |
Tratamiento |
Repeticiones |
Dosis |
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1 |
Control (agua) |
6 |
5 mL |
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2 |
Canela en polvo |
6 |
1 g |
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3 |
Canela en infusión |
6 |
5 mL |
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4 |
Abamectina |
6 |
0,6 mL |
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5 |
Extracto etanólico |
6 |
5 mL |
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6 |
Testigo |
6 |
- |
Figura 2. Arenas para evaluar la efectividad de la canela
Para el análisis de los datos se utilizó el paquete estadístico Statistix, versión 7, mediante estadística descriptiva. En lo relacionado a los ensayos sobre la eficacia se utilizó el mismo paquete estadístico empleando la prueba Krukal- Wallis para determinar diferencias entre los tratamientos y para la separación de media, se seleccionó la opción prueba de comparación de rangos de media no paramétrica.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Algunos aspectos de la biología de Tetranychus urticae.
La duración promedio del estado de huevo de T. urticae fue de 5,11 ± 0,60 días, estos presentaron forma ovalada. Al ser ovipositados exhibieron un color claro casi cristalino y de contextura acuosa, a medida del avance de su desarrollo se tornaron un color más oscuro, también se hizo visible las marcas de los ojos. Los huevos pueden ser colocados tanto en forma aislada como en grupos, generalmente cerca de las nervaduras y en los bordes de las hojas y son adheridos fuertemente a estas. La larva presentó una forma ovalada y blancuzca amarillenta con tres pares de patas, al emerger son de movimientos lentos, con el paso del tiempo se hacen más activas y también es más visible las dos manchas en los costados características de la especie. Antes de mudar la larva entra en un periodo de reposo (protocrisálida). El tiempo de duración del estado larval fue de 2,18 ± 0,46 días.
La protoninfa es un poco más grande que la larva, unas de las características que determinan este estado es la aparición de un cuarto par de patas. Con respecto a la forma es un poco más alargada y de color amarillo a verdoso. El tiempo de duración de este estado fue de 1,96 ± 0,44 días. En el estado de deutoninfa ocurre la muda de la misma manera que en el estado de larva a protoninfa, los cambios morfológicos visibles radicaron en que esta es un poco más grande que la deutoninfa, también se tornan un poco más oscuras y las manchas de los costados se hacen más visibles, en este estado se puede diferenciar bien los sexos, ya que la forma de la hembra es más redondeada y grande mientras que el macho presenta el cuerpo un poco más ahusado y de un coloración más clara, el tiempo de desarrollo fue de 1,75 ± 0,43 días siendo el tiempo más corto de los diferentes estados estudiados (Cuadro 2).
Cuadro 2. Estadios de desarrollo promedio del ácaro Tetranychus urticae en rosa
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Fases de desarrollo |
Tiempo (días) |
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Huevo Larva Protoninfa Deutoninfa |
5,11 ± 0,60 2,18 ± 0,46 1,96 ± 0,44 1,75 ± 0,43 |
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Total |
11,01 ± 0,69 |
El tiempo requerido para el desarrollo de T.urticae desde el estado de huevo hasta adulto es de 11,01 ± 0,69 días; como se observa en el (Cuadro 2). Este resultado es similar al encontrado en otros estudios, como el realizado por Gallardo et al. (2005), quienes evaluaron el ciclo biológico de T urticae en pimiento a una temperatura de 27°C demostrando que el tiempo de desarrollo completo fue de 8,2 días. En el estado de huevo el tiempo requerido fue de 2,7 días, larva 1,8 y ninfa 3,7 días.
El ciclo biológico (huevo-adulto) de T. Urticae fue estudiado por Pazmiño et al. (2018) en hojas de fresa pertenecientes a diferentes variedades. Los resultados arrojaron diferencias relacionadas con el efecto del sustrato de cría, siendo el tiempo de desarrollo significativamente más corto cuando fue criado sobre discos de hoja de fresa variedad Festival, el cual fue 14,0% menor que en la variedad San Andreas.
Estudios realizados por Abou-Elella & Abdel-Khalek, (2020) demostraron que el ciclo de vida T.urticae puede variar de acuerdo al hospedero y la calidad de la planta, afectando su supervivencia. Tanto los machos como las hembras de T. urticae se desarrollaron con éxito de huevo a adulto en diferentes plantas hospederas. Los resultados revelaron que la tasa de supervivencia varió del 53 % en los cultivares de guisantes regulares al 99% en los cultivares de frijol G6. El tiempo de desarrollo de huevo a adulto estuvo significativamente influenciado entre los cultivares de plantas hospedantes probados y varió de 9,75 días en frijol G6 a 20,42 días en guisante regular. En consecuencia, los parámetros de crecimiento de la población también fueron significativamente influenciados por diferentes plantas hospederas.
Determinación de los efectos de la canela sobre Tetranychus urticae en plantas de rosa, bajo condiciones de laboratorio.
El tratamiento más efectivo estuvo conformado por la canela en infusión, con una mortalidad a las 3 horas de observación de 41,66 ± 7,57, (Cuadro 3), demostrando un efecto inmediato ya que las hembras murieron después de la aplicación (Figura 3). Posteriormente se pudo observar el aumento de la mortalidad hasta llegar a las 24 horas con un 60,00 ± 14,04. Con respecto a los huevos de T. urticae al igual que en las hembras el tratamiento en infusión fue el que alcanzó mayor control, con una mortalidad de 36,66 ± 14,2 a las 24 horas. Cambios como la coloración en los huevos comenzaron a notarse a partir de las 9 horas de observación tornándose cada vez más oscuros, y al igual que en las hembras el efecto final mostraba daños sobre su superficie.
Figura 3. Imagen lateral de hembra Tetranychus urticae posterior a la aplicación del tratamiento canela en infusión
Fernández et al. (2015) realizaron evaluaciones donde midieron el efecto de productos comerciales a base de canela y otros componentes en la mortalidad sobre el ácaro Oligonychus perseae, una de las principales plagas en aguacate (Persea americana Mill) mostrando resultados prometedores. El producto Cinamite a base de canela alcanzó una eficiencia del 81%, después de 21 días de la primera aplicación, y una eficacia del 93%, tras 21 días de una segunda aplicación, reafirmando el efecto que tiene Cinnamomum zeylanicum como acaricida.
El porcentaje de mortalidad en el caso de la canela en polvo fue 11,66 ± 11,69; este se registró en el transcurso de las primeras tres horas, en las siguientes observaciones, las hembras cubiertas con las partículas de la canela no mostraron ningún tipo de síntoma de intoxicación como hiperexcitación o repulsión. Cabe destacar que el producto no posee efecto letal sino de repelencia, el efecto de la canela en polvo para los huevos, registró una mortalidad de 6,66 ± 2,58, a partir de las 12 horas, esto fue presumiblemente por deshidratación.
Para el tratamiento conformado por el extracto etanólico de canela, la mayor mortalidad en hembras fue registrada a las 3 horas con un porcentaje de 38,33 ±16,2 (Figura 4) y para el caso de los huevos alcanzó una mortalidad de 7,50 ± 6,88 a las 24 horas (Figura 5), se puede inferir que el resultado de baja mortalidad, pudo ocurrir ya que los compuestos activos que se encuentran en la corteza de la canela y que actúan como tóxicos para otros organismos son solubles en el agua, no obstante el solvente utilizado en este tratamiento fue el etanol, esto pudo haber impedido la liberación de los metabólitos e ingredientes activos de la canela en el etanol, limitando su efecto sobre la plaga.
Figura 4. Porcentaje de mortalidad por tratamiento y tiempos de observación a las 3, 6, 9, 12 y 24 horas para Tetranychus urticae.
Figura 5. Porcentaje de
mortalidad por tratamiento y tiempos de observación a las 3, 6, 9, 12 y 24
horas para Tetranychus urticae en estado de huevo.
En el tratamiento a base de abamectina (Vertimec®) el porcentaje de mortalidad en hembras registrado a las 24 horas fue de 46,66 ± 20,65 este presentó residualidad, dado que las hembras murieron en un tiempo progresivo, el porcentaje para los huevos fue de 5,00 ± 3,16; estas cifras relativamente bajas se podría atribuir a que la abamectina (Vertimec®) no ejerce un efecto ovicida, este es un grupo de plaguicidas que han reportado desarrollo de bajos a moderados niveles de resistencia en poblaciones de T. urticae.
CONCLUSIONES
El tiempo requerido para el desarrollo de T. urticae desde el estado de huevo hasta adulto sobre hojas de rosa, en condiciones de laboratorio fue de 11,01 ± 0,69 días, mientras que el tratamiento conformado por la canela en infusión demostró el mayor efecto acaricida alcanzando un 60% de mortalidad a la única dosis probada, esto representa una alternativa de manejo fácilmente aplicable y con potencial para introducir en todos los sistemas de producción.
LITERATURA CITADA
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Agut, B., Pastor, V., Jaques, J. A., & Flors, V. 2018. Can plant defence mechanisms provide new approaches for the sustainable control of the two-spotted spider mite Tetranychus urticae? International Journal of Molecular Sciences, 19(2):614.
Bamel, K., & Gulati, R. 2021. Biology, population built up and damage potential of Red spider mite, Tetranychus urticae Koch (Acari: Tetranychidae) on marigold: A review.
Chacón-Hernández, J. C., Camacho-Aguilar, I., Cerna-Chavez, E., Ordaz-Silva, S., Ochoa-Fuentes, Y. M., & Landeros-Flores, J. 2018. Effects of Tetranychus urticae and Phytoseiulus persimilis (Acari: Tetranychidae: Phytoseiidae) on the chlorophyll of rosal plants (Rosa sp.). Agrociencia, 52(6):895–909.
de Rosamel, C., & Heinrichs, V. 2020. El gran libro de las especias. Parkstone International.
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Gallardo, A., Vásquez, C., Morales, J., & Gallardo, J. 2005. Biología y enemigos naturales de Tetranychus urticae en pimentón.
Gilstrap, F. E., Friese, D. D., Summy, K. R., & Armstrong, A. A. 1977. Persistence of Amblyseius californicus, Phytoseiulus persimilis and Typhlodromus occidentalis released in field populations of Banks grass mite on corn. Southwestern Entomologist.
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Pazmiño, P., Lema, G., Mendoza, D., Velástegui, G., & Vásquez, C. (2018). Parámetros biológicos de Tetranychus urticae Koch (Acari: Tetranychidae) alimentado sobre dos cultivares de fresa en Ecuador. Bioagro, 30(3), 229-234.
Puspitarini, R. D., Fernando, I., Rachmawati, R., Hadi, M. S., & Rizali, A. 2021. Host plant variability affects the development and reproduction of Tetranychus urticae. International Journal of Acarology, 47(5):381–386.
Santamaria, M. E., Arnaiz, A., Rosa-Diaz, I., González-Melendi, P., Romero-Hernandez, G., Ojeda-Martinez, D. A., Garcia, A., Contreras, E., Martinez, M., & Diaz, I. 2020. Plant defenses against Tetranychus urticae: mind the gaps. Plants, 9(4):464.
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